iemlogo

Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы

Назад

Заведующий лабораторией – Коржевский Дмитрий Эдуардович

Доктор медицинских наук, профессор РАН

Dmitrii Eduardovich Korzhevskii

Doctor of Medicine (MD) in Histology and Cytology (2001); Professor of the Russian Academy of Sciences.

Chef of the Laboratory of Functional Morphology of the Central and Peripheral Nervous System, Institute of Experimental Medicine, St. Petersburg, Russia;
Professor at the Chair of Fundamental Problems of Medicine and Medical Technology, St. Petersburg State University, St. Petersburg, Russia.

Member of the Editorial Board of the following journals: Morfologiia (Morphology), Biological Communications, Gheny i kletki (Genes and Cells).

Basic research interests: normal and pathological morphology of the nervous system, neurophysiology, immunology, developmental biology, histological techniques, immunocytochemistry, confocal microscopy.

Телефон: (812) 234-24-38

Электронная почта: DEK2@yandex.ru

Электронная почта: iemmorphol@yandex.ru

Краткая история лаборатории

Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы ведет свое начало от Лаборатории экспериментальной гистологии, организованной в составе Отдела общей морфологии в 1936 году проф. Николаем Григорьевичем Хлопиным.

В 1945 году лаборатория была реорганизована в Отдел гистологии.

После Н.Г. Хлопина заведующим отделом по совместительству был член-корр. АМН СССР Серафим Иванович Щелкунов.

В 1956 г. и.о. руководителя Отдела гистологии короткое время был член-корр. АМН СССР Павел Григорьевич Светлов.

В 1960 году руководителем Лаборатории экспериментальной гистологии стал проф. Владимир Павлович Михайлов. В 1979 году В.П. Михайлов перешел на должность научного консультанта и несколько лет обязанность руководителя лаборатории выполнял его ученик д.б.н. Сергей Александрович Кетлинский.

В 1980 г. Лаборатория экспериментальной гистологии входит в состав вновь организованного Отдела морфологии вместе с Лабораторией цитологии (рук. отдела член-корр. РАМН Владимир Александрович Отеллин).

В 2008 г. лаборатория получает название «Лаборатория функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы» (рук. – проф. РАН Д.Э. Коржевский) и входит в состав реорганизованного академиком РАМН В.А. Нагорневым Отдела общей и частной морфологии.

Основные направления исследований

  • Исследование структурной и медиаторной организации органов нервной системы при повреждающих воздействиях и старении.
  • Изучение развития головного мозга и дифференцировки элементов нервной ткани.
  • Исследование нейрогенеза.
  • Изучение цитохимических особенностей клеток спинного мозга и чувствительного ганглия крысы в нормальном онтогенезе и в эксперименте.
  • Исследование особенностей иннервации периферических органов (поджелудочной железы, сердца, сосудов) с помощью современных иммуногоистохимических методов в онтогенезе и при патологии.
  • Исследование дифференцировки нейральных клеток-предшественников и мезенхимных стволовых клеток в условиях аллотрансплантации в поврежденный периферический нерв.


На научном заседании лаборатории функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы (2012 г.)

Основные научные результаты за последние 5 лет

  1. Установлено, что после кратковременной фокальной ишемии происходит миграция микроглиоцитов через эпендиму в полость желудочка. При помощи трехмерной реконструкции астроцитов субвентрикулярной зоны конечного мозга показано, что после ишемии происходит дезорганизация  астроглиального компонента  этой пролиферативной зоны.
  2. Показано, что после транзиторной фокальной ишемии в субвентрикулярной зоне конечного мозга появляются атипичные звезчатые гладкомышечные клетки, отсутствующие в интактном головном мозге.
  3. Морфологически охарактеризована неизвестная ранее популяция клеток головного мозга крысы – внеэпендимные эпендимоциты.
  4. Установлено, что в нейронах черного вещества головного мозга человека железо может накапливаться в ядрышках клетки.
  5. Установлено, что клубочки мозжечка (синаптические группы зернистого слоя коры) у человека крупнее, чем у крысы, и имеют более многочисленные индивидуальные синаптические контакты.
  6. В спинном мозге новорожденных и половозрелых крыс выявлена популяция нейронов с колокализацией холинацетилтрансферазы и NO-синтазы.
  7. Установлено, что диссоциированные клетки эмбриональных закладок ЦНС выживают в течение 2 мес. после введения в поврежденный нерв крысы. Лишь небольшая часть этих клеток дифференцируется в NeuN-иммунопозитивные нейроны. В эксперименте показано, что введение в поврежденный нерв диссоциированных клеток эмбриональных закладок спинного мозга крысы через два месяца после операции приводит к увеличению числа миелинизированных регенерирующих нервных волокон реципиента.
  8. Показано, что мультипотентные стромальные стволовые клетки костномозгового происхождения, введенные в головной мозг, обнаруживают фибробластоподобный рост в течение первой недели наблюдения.
  9. Установлено, что мультипотентные стромальные стволовые клетки костного мозга крысы выживают в течение семи суток после аллотрансплантации в поврежденный нерв. Бóльшая их часть локализуется в эпиневральной оболочке нерва.
  10. На основе иммуногистохимических реакций на периферин, хромогранин А и основной белок миелина разработаны новые подходы для селективного выявления нервных проводников в различных внутренних органах человека и лабораторных животных.
  11. Применение специфических иммуногистохимических маркеров (синаптофизин, хромогранин А, PGP5) для изучения поджелудочной железы человека показало, что при хроническом панкреатите дистрофические изменения со стороны железистой и соединительной тканей, сосудов и выводных протоков коррелируют с нарушением нервных аппаратов. Установлено, что при хроническом панкреатите присутствует ассоциация PGP 9.5-иммунопозитивных терминалей с тучными клетками.

Протоколы иммуногистохимических реакций, отработанные сотрудниками лаборатории

Иммуноцитохимическая реакция на белок S100

Белок S100 — кальций-связывающий белок, получивший свое название благодаря растворимости в насыщенном растворе сульфата аммония (от англ. Solubility-растворимый). Установлено, что S100 — это семейство, включающее в себя 25 белков с молекулярной массой около 10,5 кДа. Основная масса белков семейства S100 (до 85-90% от общего содержания в нервной ткани) сосредоточена в астроцитах; 10-15% – экспрессируется в нейронах, минимальное их количество определяется в олигодендроцитах. Также экспрессия этих белков характерна для глиальных элементов периферической нервной системы.Протокол окраски отработан для поликлональных кроличьих антител к S100 (Z0311, Dako, Дания) без применения методов демаскирования антигена.Подробнее – см. статьи:Колос Е.А., Коржевский Д.Э. Виментин и белок S100 в клетках формирующегося чувствительного узла спинномозгового нерва // Морфология. 2013. Т. 143. № 3. С. 73-74.Петрова Е.С., Павлова Н.В., Коржевский Д.Э. Современные морфологические подходы к изучению регенерации периферических нервных проводников // Медицинский академический журнал. 2012. Т. 12. № 3. С. 15-29.

Последовательность обработки препаратов

  • депарафинизация препаратов в ксилоле и регидратация в спиртах нисходящей концентрации с последующей промывкой в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • блокирование эндогенной пероксидазы в 3% водном растворе перекиси водорода 10 мин при комнатной температуре, промывка в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • перенесение стекол в 0,01 М фосфатно-солевой буфер (ФСБ) pH 7,4 на 5 мин
  • инкубация с первичными антителами к S100 (разведение 1:600) во влажной камере при 40°C 60 мин с последующей промывкой в ФСБ в течение 5 мин;
  • инкубация с вторичными антителами из набора Sensitive Polymer-HRP Detection Kit HRP/Dab (Bio Genex, США) 30 мин при комнатной температуре, далее промывка в ФСБ в течение 5 мин;
  • инкубация с раствором 3,3-диаминобензидинтетрагидрохлорида («DAB+», Dako, Дания) под визуальным контролем, не допуская появления неспецифического фона, 2-3мин, затем промывка в 2—3 порциях дистиллированной воды по 3—5 мин в каждой;
  • дегидратация в спиртах восходящей концентрации, просветление в ксилоле и заключение в полистирол или другие перманентные среды.

Результат окраски по данному протоколу срезов спинномозгового ганглия новорожденной крысы.
Иммуноцитохимическая реакция на белок PGP 9,5

Семейство белков, идентифицированных в семидесятых годах прошлого века, в  гомогенате головного мозга человека с применением двумерного электрофореза в полиакриламидном геле получило название «Protein gene products» или сокращенно PGP.  В зависимости от расстояния миграции в полиакриламидном геле, белки получили числовые обозначения. Одним из таких специфических для нервной ткани белков был  PGP 9.5 – протеин с молекулярной массой 27 кДа. Показано, что PGP 9.5 является удобным нейрональным маркером для центральной и периферической нервной системы и широко применяется для исследования иннервации различных органов. Интенсивно окрашиваются не только перикарионы всех нервных клеток, но и аксоны крупных сенсорных и двигательных нейронов, а также вегетативные нервные волокна. Из клеток, не относящихся к нервным и нейроэндокринным, но содержащим значительное количество PGP 9.5 следует отметить сперматогонии, ооциты и клетки Лейдига. PGP 9.5 считается цитоплазматическим белком, однако 5% нейронов в центральной и периферической нервной системе имеют положительную ядерную реакцию

Протокол окраски отработан для поликлональных кроличьих антител к PGP 9.5 (E334, Spring Bioscience, США) без применения методов демаскирования антигена. Данный протокол применяется для выявления нервных структур (ганглиев, нервных стволов, нервных пучков, нервных сплетений, нервных окончаний) периферической нервной системы и нейроэндокринных клеток.

Подробнее – см. статью Коржевский Д.Э., Сухорукова Е.Г., Петрова Е.С., Цуканова А.Ф., Чумасов Е.И. Применение иммуногистохимической реакции на белок PGP 9.5 для изучения иннервации сердца крысы и человека // Морфология. 2013. Т. 143. № 3. С. 77-80.

Последовательность обработки препаратов

  • депарафинизация препаратов в ксилоле и регидратация в спиртах нисходящей концентрации с последующей промывкой в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • блокирование эндогенной пероксидазы в 3% водном растворе перекиси водорода 10 мин при комнатной температуре, промывка в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • перенесение стекол в 0,01 М фосфатно-солевой буфер (ФСБ) pH 7,4 на 5 мин
  • инкубация с первичными поликлональными кроличьими антителами к PGP 9.5 (разведение 1:200) во влажной камере при 27°C  24 часа с последующей промывкой в ФСБ в течение 5 мин;
  • инкубация с вторичными антикроличьими антителами EnVision+/HRP-Anti- Rabbit (Dako, Дания) 35 мин при комнатной температуре, далее промывка в ФСБ в течение 5 мин;
  • инкубация с раствором 3,3-диаминобензидинтетрагидрохлорида («DAB+», Dako, Дания) под визуальным контролем, не допуская появления неспецифического фона, 2-3мин, затем промывка в 2—3 порциях дистиллированной воды по 3—5 мин в каждой;
  • при необходимости препараты можно подкрасить астровым синим;
  • дегидратация в спиртах восходящей концентрации, просветление в ксилоле и заключение в полистирол или другие перманентные среды.

В результате проведения реакции нервные структуры окрашиваются в коричневый цвет. При подкраске препаратов астровым синим цитоплазматические структуры окрашиваются в сине-зеленый цвет.

Результат обработки по данному протоколу препарата поджелудочной железы (А) и сердца (Б) крысы представлен на фотографиях. Нервные структуры сердца и поджелудочной железы, а также клетки островков Лангерганса содержат белок PGP 9.5.


А – Результат обработки по данному протоколу препарата поджелудочной железы крысы

 


Б – Результат обработки по данному протоколу препарата сердца крысы
 Иммуноцитохимическая реакция на серотонин  (5-гидрокситриптамин, 5-HT)

Реакция используется для выявления серотонина (5-HT) в клетках различной локализации,  способных синтезировать или накапливать этот моноамин. У млекопитающих 5-HT выявляется в серотонинергических нейронах ядер шва, EC-клетках, присутствующих в составе эпителия пищеварительного тракта, клетках карциноидных опухолей различной локализации.

В представленном протоколе могут быть использованы первичные поликлональные (кроличьи) антитела NCL-SEROTp (Novocastra, UK) в разведении 1:200 без применения методов теплового демаскирования антигена. На основе проверки различных протоколов выявления 5НТ-иммунореактивных клеток был установлен оптимальный вариант обработки препаратов. Подробнее – см. статью: Коржевский Д.Э., Драй Р.В., Костюкевич С.В. Иммуноцитохимический метод выявления EC- (энтерохромаффинных) клеток эпителия слизистой оболочки кишки крысы // Морфология. 2008. 133(1):78-81.

Последовательность обработки препаратов:

  • депарафинизация препаратов в ксилоле и регидратация в спиртах снижающейся концентрации с последующей промывкой в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • блокирование эндогенной пероксидазы в 3% водном растворе перекиси водорода 10 мин, при комнатной температуре, промывка в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • перенесение стекол в 0,01 М фосфатно-солевой буфер (ФСБ) рН 7,4 на 5-10 мин;
  • инкубация в блокировочном растворе – 5% растворе бычьего сывороточного альбумина фракция V по Кону (Serva, Германия, Fluka, США) на ФСБ или специальном разбавителе антител (antibody diluent Dako, Дания) – 10 мин, при комнатной температуре;
  • удаление бычьего сывороточного альбумина без промывки, инкубация с первичными антителами к 5-НТ 30-40 мин, во влажной камере при 37-40˚C, с последующей промывкой в ФСБ 5-10 мин;
  • инкубация с вторичными биотинилированными антителами из набора LSAB2 или LSAB+ (Dako, Дания) с добавкой 1-2% нормальной сыворотки крысы в течение 30 мин, при комнатной температуре; затем промывка в ФСБ (5-10) мин;
  • инкубация со стреаптавидин-пероксидазой (из набора LSAB2 (LSAB+) – Dako, Дания) 10-15 мин при комнатной температуре, промывка в ФСБ (5-10 мин);
  • инкубация с раствором 3,3-диаминобензидинтетрагидрохлорида («DAB+», Dako, Дания) под визуальным контролем не допуская появления неспецифического фона (1-5 мин), промывка в дистиллированной воде 5-10 мин;
  • при необходимости препараты можно подкрасить альциановым синим и квасцовым гематоксилином (с подсинением в щелочной воде);
  • обезвоживание в спиртах возрастающей концентрации, просветление в ксилоле обычным способом, заключение в полистирол или другие перманентные среды.

Общее время обработки обычно составляет 2,5-3,0 ч. Результат обработки по данному протоколу препарата тонкой кишки человека представлен на фотографии.


Результат обработки по данному протоколу препарата тонкой кишки человека
 Иммуноцитохимическая реакция на глиальный фибриллярный кислый белок (ГФКБ, GFAP)

Белок GFAP участвует в формировании промежуточных филаментов (компонент цитоскелета) астроцитов головного мозга. Считается, что реакция на GFAP является аналогом золото-сублиматного метода импрегнации по Кахалю – одного из классических методов выявления астроцитарной глии. Реакция, проводимая согласно представленному протоколу, может быть использована для выявления GFAP-иммунопозитивных астроцитов в интактной нервной ткани и при патологических состояниях ЦНС.

Протокол отработан для поликлональных кроличьих антител (N1506, Dako, Дания) и моноклональных мышиных антител (клон SPM507, Spring Bioscience, США, в разведении 1:100) без применения методов демаскирования антигена. Подробнее – см. статью Сухорукова Е.Г., Коржевский Д.Э., Кирик О.В., Коржевская В.Ф. Иммуногистохимическое выявление астроцитов головного мозга при черепно-мозговой травме // Судебно-медицинская экспертиза, 2010, 1: 14-16. 

Последовательность обработки препаратов:

  • депарафинизация препаратов в ксилоле и регидратация в спиртах нисходящей концентрации с последующей промывкой в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • блокирование эндогенной пероксидазы в 3% водном растворе перекиси водорода 10 мин при комнатной температуре, промывка в дистиллированной воде2-5 мин;
  • перенесение стекол в 0,01 М фосфатно-солевой буфер (ФСБ) pH 7,4 на 5 мин (на этом этапе обработки и далее ФСБ может быть заменен трис-солевым буфером с pH 7,6);
  • инкубация с первичными антителами к GFAP во влажной камере при 40°C 30 мин с последующей промывкой в ФСБ в течение 5 мин;
  • инкубация со вторичными антикроличьими или антимышиными антителами соответственно, конъюгированными с полимером и пероксидазой хрена («EnVision+», Dako, Дания) 35 мин при комнатной температуре, далее промывка в ФСБ в течение 5 мин;
  • инкубация с раствором 3,3-диаминобензидинтетрагидрохлорида («DAB+», Dako, Дания) под визуальным контролем, не допуская появления неспецифического фона, 2-3мин, затем промывка в 2—3 порциях дистиллированной воды по 3—5 мин в каждой;
  • при необходимости препараты можно подкрасить гематоксилином Джилла в течение 0,5 мин с последующим подсинением в щелочной воде;
  • дегидратация в спиртах восходящей концентрации, просветление в ксилоле и заключение в полистирол или другие перманентные среды.

Общая продолжительность протокола обработки препаратов составляет 2 ч 15 мин. Результаты обработки по данному протоколу срезов головного мозга человека (а) и крысы (б) представлены на фотографиях.


Результаты обработки по данному протоколу срезов головного мозга человека

 


Результаты обработки по данному протоколу срезов головного мозга крысы
 Иммуноцитохимическая реакция на ядерный белок NeuN

Реакция используется для выявления нейронов. В представленном протоколе могут быть использованы первичные моноклональные мышиные антитела к NeuN (клон А60, Chemicon, США) в разведении 1:400 без применения методов теплового демаскирования антигена. Подробнее – см. статью: Коржевский Д.Э., Гилерович Е.Г, Зинькова Н.Н. [и др.] Иммуногистохимическое выявление нейронов головного мозга с помощью селективного маркера NeuN  // Морфология. 2005. 128(5):76-78.

Последовательность обработки препаратов:

  • депарафинизация препаратов в ксилоле и регидратация в спиртах снижающейся концентрации с последующей промывкой в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • блокирование эндогенной пероксидазы в 3% водном растворе перекиси водорода 10 мин, при комнатной температуре, промывка в дистиллированной воде 2-5 мин;
  • перенесение стекол в 0,01 М фосфатно-солевой буфер (ФСБ) рН 7,4 на 5-10 мин;
  • инкубация в блокировочном растворе – 5% растворе бычьего сывороточного альбумина фракция V по Кону (Serva, Германия, Fluka, США) на ФСБ или специальном разбавителе антител (antibody diluent Dako, Дания) – 10 мин, при комнатной температуре;
  • удаление бычьего сывороточного альбумина без промывки, инкубация с первичными антителами к белку NeuN  во влажной камере при 40˚С в течение 60 мин  с последующей промывкой в ФСБ 5-10 мин;
  • инкубация с реагентом  EnVision+/ HRP-Anti-Mouse (Dako, Дания) в течение 30 мин при температуре 27°C. При работе со срезами головного мозга крысы в реагент EnVision+/ HRP-Anti-Mouse следует заранее добавить нормальной крысиной сыворотки до 2,0% для устранения возможной неспецифической реакции с иммуноглобулинами крысы. Вместо реагента EnVision+/ HRP-Anti-Mouse могут быть использованы вторичные антитела из наборов  Reveal Polyvalent HPR DAB Delection System, MACH2, Super Sensitive Polymer-HRP Detection System;
  • после промывки в ФСБ в течение 5-10 мин инкубация с раствором 3,3-диаминобензидинтетрагидрохлорида («DAB+», Dako, Дания) под визуальным контролем не допуская появления неспецифического фона (1-5 мин), промывка в дистиллированной воде 5-10 мин;
  • при необходимости препараты можно подкрасить 0,2 %-ным водным раствором астрового синего в течение 1-3 мин;
  • обезвоживание в спиртах возрастающей концентрации, просветление в ксилоле обычным способом, заключение в полистирол или другие перманентные среды.

Общее время обработки обычно составляет 2,5-3,0 ч. Результат обработки по данному протоколу препарата головного мозга крысы в области третьего желудочка представлен на фотографии.


Результат обработки по данному протоколу препарата головного мозга крысы в области третьего желудочка

Наиболее значимые публикации за последние 5 лет

  1. Морфологическая диагностика: подготовка материала для морфологического исследования и электронной микроскопии (руководство) / Под редакцией Д.Э.Коржевского. Санкт-Петербург, СпецЛит. 2013.127 с.
  2. Молекулярная нейроморфология. Нейродегенерация и оценка реакции нервных клеток на повреждение (монография) / Под редакцией Д.Э.Коржевского. Санкт-Петербург, СпецЛит. 2015. 110 с.
  3. Теоретические основы и практическое применение методов иммуногистохимии (руководство) / Под редакцией Д.Э.Коржевского. Санкт-Петербург, СпецЛит. 2014. 110 с. (2-е издание, исправленное и дополненное).
  4. Иммуногистохимическое исследование головного мозга / Под редакцией Д.Э.Коржевского. Санкт-Петербург, СпецЛит, 2016. 143 с.
  5. Korzhevskii D.E., Kirik O., Sukhorukova E. Immunocytochemistry of microglial cells // Neuromethods. 2015. Т. 101. С. 209-224.
  6. Veselkina O.S., Morozov V.A., Isaeva A.V., Portsel M.N., Korzhevskii D.E., Tihonov D.B., Barygin O.I., Vlasov T.D. Neuroprotective activity of creatylglycine ethyl ester fumarate // Journal of Stroke and Cerebrovascular Diseases. 2015. V.. 24. № 3. С. 591-600.
  7. Shaidakov E.V., Grigoryan A.G., Korzhevskii D.E., Rosukhovski D.A., Bulatov V.L., Tsarev O.I., Ilyukhin E.A. Morphologic changes in the vein after different numbers of radiofrequency ablation cycles // Journal of Vascular Surgery: Venous and Lymphatic Disorders. 2015.V. 3. №4. С. 358-363.
  8. Чумасов Е.И., Майстренко Н.А., Коржевский Д.Э. и др. Особенности нейроиммунных межклеточных взаимоотношений в поджелудочной железе при хроническом панкреатите // Вестник Российской военно-медицинской академии. 2013. №3(43). с. 135-139.
  9. Коржевский Д.Э., Кирик О.В., Сухорукова Е.Г., Сырцова М.А. Микроглия черного вещества головного мозга человека //Медицинский академический журнал. 2014. Т. 14. №4. С. 68-72.
  10. Гилерович Е.Г., Сухорукова Е.Г., Кирик О.В., Григорьев И.П., Коржевский Д.Э. Выявление клубочков в мозжечке человека при помощи иммуноцитохимической реакции на синаптофизин и конфокальной лазерной микроскопии // Морфология. 2014. Т. 146. №5. С. 73-77.
  11. Сырцова М.А., Колос Е.А., Снегова В.А., Гусельникова В.В. Применение различных флуоресцентных красителей для окраски ядер клеток в фиксированном биологическом материале // Медицинский академический журнал. 2014. Т. 14. №2. С. 34-39.
  12. Соколова И.Б., Федотова О.Р., Гилерович Е.Г., Сергеев И.В., Анисимов С.В., Пузанов М.В., Дворецкий Д.П. Эффективность применения интрацеребральной трансплантации мезенхимных стволовых клеток для коррекции возрастных изменений микроциркуляции в головном мозге крыс// Цитология. 2014. Т. 56. № 4. С. 273-282.
  13. Петрова Е.С., Исаева Е.Н. Изучение влияния аллотрансплантатов эмбриональных закладок спинного мозга крыс на рост регенерирующих волокон нерва реципиента // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. 2014. №6. С. 549-556.
  14. Сырцова М.А., Сухорукова Е.Г., Коржевский Д.Э. Нейроэпителиальные тельца легкого у крысы // Морфология. 2014. Т. 145. № 1. С. 60-62.
  15. Гилерович Е.Г., Григорьев И.П., Кирик О.В., Алексеева О.С., Сухорукова Е.Г., Коржевский Д.Э. Распределение нейроглобина в коре мозжечка человека (иммуногистохимическое исследование) // Морфология. 2014. Т. 146. №4. С. 75-77.
  16. Чумасов Е.И., Петрова Е.С., Коржевский Д.Э. Особенности взаимоотношений нервных аппаратов, островков Лангерганса и кровеносных сосудов в поджелудочной железе крысы // Медицинский академический журнал. 2015. Т. 15. №3. С. 38-44.
  17. Колос Е.А., Коржевский Д.Э. Распределение холинергических и нитроксидергических нейронов в спинном мозгу у новорожденных и взрослых крыс // Морфология. 2015. Т. 147. №2. С. 32-37.
  18. Коржевский Д.Э., Кирик О.В. Микроглия головного мозга и микроглиальные маркеры // Морфология. 2015. Т. 147. № 3. С. 37-44.
  19. Петрова Е.С. Восстановление поврежденного нерва с помощью клеточной терапии (фундаментальные аспекты) // Acta Naturae. 2015. Т. 7. №3 (26). С. 42-53.
  20. Григорьев И.П., Коржевский Д.Э.Тельца Маринеско – внутриядерные включения дофаминергических нейронов // Медицинский академический журнал. 2015. Т. 15. №2. С. 28-34.
  21. Сухорукова Е.Г., Коржевский Д.Э., Алексеева О.С. Глиальный фибриллярный кислый белок – компонент промежуточных филаментов астроцитов мозга позвоночных // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 2015. Т. 51. №1. С. 3-10.
  22. Guselnikova V.V., Korzhevskiy D.E. NeuN as a neuronal nuclear antigen and neuron differentiation marker // Acta Naturae. 2015. Т. 7. №2 (25). С. 42-47.
  23. Сухорукова Е.Г., Гусельникова В.В. Ферменты-маркеры астроцитов // Медицинский академический журнал. 2015. Т. 15. №3. С. 31-37.
  24. Сухорукова Е.Г., Кирик О.В., Зеленкова Н.М., Коржевский Д.Э. Нейрональный ядерный антиген NeuN – показатель сохранности нервной ткани и пригодности ее для иммуногистохимического исследования // Медицинский академический журнал. 2015. Т. 15. №1. С. 63-67.
  25. Петрова Е.С. Поиск способов стимуляции регенерации поврежденного нерва с помощью новых клеточных технологий // Медицинский академический журнал. 2015. Т.15. №4. С.7-19.
  26. Кирик О.В., Григорьев И.П., Алексеева О.С., Коржевский Д.Э. Трехмерная организация цитоплазматических нейроглобин-иммунопозитивных структур нейронов продолговатого мозга крысы // Биологические мембраны: Журнал мембранной и клеточной биологии. 2016. Т. 33. №3. С. 207-212.
  27. Петрова Е.С. Нейроны разной медиаторной принадлежности в аллотрансплантатах эмбрионального неокортекса, развивающихся в седалищном нерве крысы // Известия Российской академии наук. Серия биологическая. 2016. №2. С. 128-136.
  28. Колос Е.А., Коржевский Д.Э.Неоднородность реакции на холинацетилтрансферазу в холинергических нейронах// Нейрохимия. 2016. Т. 33. №1. С. 56-62.
  29. Кирик О.В., Алексеева О.С., Москвин А.Н., Коржевский Д.Э. Влияние гипербарической оксигенации на состояние субэпендимной микроглии головного мозга крысы // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 2016. Т. 50. 4. С. 312-314.
  30. Кирик О.В., Суфиева Д.А., Назаренкова А.В., Коржевский Д.Э. Белок клеточных контактов бета-катенин в клетках эпендимы и эпителия сосудистого сплетения боковых желудочков головного мозга // Морфология. 2016. Т. 149. № 1. С. 33-37.
  31. Колос Е.А., Коржевский Д.Э. Характеристика Iba-1-иммунопозитивных клеток в спинном мозге и спинномозговом ганглии крысы // Медицинский академический журнал. 2016. Т.16. №2. С.56-64.
  32. Гусельникова В.В., Кирик О.В., Федорова Е.А. и др. Быстрый способ окраски амилоида Конго красным для световой и флюоресцентной микроскопии // Морфология. 2016. Т. 149. № 2. С. 84-88.
  33. Сырцова М.А. Нитроксидергические клетки легкого у крысы // Морфология. 2016. Т. 150. № 6. С. 51-54.
  34. Guselnikova V.V., Gudkova A.Ya., Semernin E.N., Grudinina N.A., Krutikov A.N., Shavloskii M.M., Mil’man B.L., Korzhevskii D.E., Mikhailova E.V., Kaminskaya E.V., Mikhailov V.M. Characterization of amyloid deposits found in internal organs of mdx mice // Cell and Tissue Biology. 2017. V. 11. № 1. С. 27-34.
  35. Колос Е.А., Коржевский Д.Э. Активация микроглиоцитов передних рогов спинного мозга крысы после введения бактериального липополисахарида // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017. Т. 163. № 4. C. 520-524.

Сотрудники лаборатории функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы Отдела общей и частной морфологии

Гилерович Елена Георгиевна

Ведущий научный сотрудник, доктор медицинских наук.

Сфера научных интересов: нейротрансплантация, нейрогенез, влияние стволовых клеток на течение патологических процессов в головном и спинном мозге, структура мозжечка в норме и патологии.

Чумасов Евгений Иванович

Старший научный сотрудник, доктор биологических наук, профессор.

Сфера научных интересов: гистогенез нервных тканей в норме и патологии.

Григорьев Игорь Павлович

Старший научный сотрудник, кандидат биологических наук, ученое звание – старший научный сотрудник.

Сфера научных интересов: биохимия и морфология нервной системы.

Петрова Елена Сергеевна

Старший научный сотрудник, кандидат биологических наук, ученое звание – старший научный сотрудник.

Сфера научных интересов: гистогенез и регенерация тканей центральной и периферической нервной системы; дифференцировка нейральных стволовых/прогениторных клеток и мезенхимных стволовых клеток в условиях измененного микроокружения.

Кирик Ольга Викторовна

Старший научный сотрудник, кандидат биологических наук.

Сфера научных интересов: нейробиология, молекулярная биология, конфокальная лазерная микроскопия.

Сухорукова Елена Геннадьевна

Старший научный сотрудник, кандидат медицинских наук.

Сфера научных интересов: нейроанатомия, иммуногистохимия, конфокальная лазерная микроскопия, черепно-мозговая травма.

Федорова Елена Анатольевна

Научный сотрудник, кандидат биологических наук.

Сфера научных интересов: структура спинного мозга и мозжечка в норме и патологии, амилоидозы.

Колос Елена Андреевна

Младший научный сотрудник.

Сфера научных интересов: гистогенез и цитохимия спинного мозга и спинномозговых ганглиев.

Алексеева Ольга Сергеевна

Научный сотрудник, кандидат биологических наук.

Сфера научных интересов: нейрофизиология, иммуногистохимия, белки теплового шока, гипоксия, гипероксия.

Гусельникова Валерия Владимировна

Научный сотрудник, кандидат биологических наук.

Сфера научных интересов: тучные клетки, нейроиммунные взаимодействия, морфология нервной системы в норме и при патологии.

Сырцова Марина Александровна

Лаборант-исследователь.

Сфера научных интересов: моделирование бронхиальной астмы, нервные структуры легкого, иммуногистохимия.

Суфиева Дина Азатовна

Аспирант, научный сотрудник.

Сфера научных интересов: танициты в онтогенезе и при повреждении, конфокальная лазерная микроскопия, иммуногистохимия.

Безнин Глеб Владимирович

Лаборант-исследователь, кандидат медицинских наук.

Сфера научных интересов: структурно-функциональные основы нарушений поведения на модели посттравматического стрессового расстройства у крыс.


Сотрудники Лаборатории функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы (2017 г.)

Участие в конференциях сотрудников Лаборатории функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы Отдела общей и частной морфологии

X Международная научная конференция «Бабухинские чтения в Орле». 2017 г. X Международная научная конференция «Бабухинские чтения в Орле». 2017 г. Всероссийское научное совещание "Учение о тканях. Гистогенез и регенерация" ВМА  им. С.М.Кирова, 2015г Всероссийское научное совещание "Учение о тканях. Гистогенез и регенерация" ВМА им. С.М.Кирова, 2015г Всероссийское научное совещание "Учение о тканях. Гистогенез и регенерация" ВМА  им. С.М.Кирова, 2015г Всероссийское научное совещание "Учение о тканях. Гистогенез и регенерация" ВМА им. С.М.Кирова, 2015г Всероссийское научное совещание "Учение о тканях. Гистогенез и регенерация" ВМА  им. С.М.Кирова, 2015г Всероссийское научное совещание "Учение о тканях. Гистогенез и регенерация" ВМА им. С.М.Кирова, 2015г Научная конференция "StemCellBio2016: фундаменальная наука как основа клеточных технологий", Санкт-Петербург, 2016г Научная конференция "StemCellBio2016: фундаменальная наука как основа клеточных технологий", Санкт-Петербург, 2016г Конференция "Фундаментальные и прикладные проблемы нейронаук: функциональная ассиметрия, нейропластичность и нейродегенерация", Москва, 2016г Конференция "Фундаментальные и прикладные проблемы нейронаук: функциональная ассиметрия, нейропластичность и нейродегенерация", Москва, 2016г Научное совещание "Современные методы исследования гистогенеза и регенерации тканей" ВМА  им. С.М.Кирова, 2016г Научное совещание "Современные методы исследования гистогенеза и регенерации тканей" ВМА им. С.М.Кирова, 2016г Научное совещание "Современные методы исследования гистогенеза и регенерации тканей" ВМА  им. С.М.Кирова, 2016г Научное совещание "Современные методы исследования гистогенеза и регенерации тканей" ВМА им. С.М.Кирова, 2016г Научное совещание "Современные методы исследования гистогенеза и регенерации тканей" ВМА  им. С.М.Кирова, 2016г Научное совещание "Современные методы исследования гистогенеза и регенерации тканей" ВМА им. С.М.Кирова, 2016г